山茱萸环烯醚萜苷改善6-OHDA诱导帕金森病细胞模型的损伤

doi:10.3877/cma.j.issn.2095-123X.2022.06.002

目的

探索山茱萸环烯醚萜苷（CIG）对6-羟基多巴（6-OHDA）诱导的帕金森病（PD）细胞模型损伤的作用。

方法

将PC12细胞分为空白对照组（未作处理）、PD模型组（给予6-OHDA诱导PD细胞模型）、PD模型+CIG 20 μmol/L组（给予6-OHDA和20 μmol/L CIG）、PD模型+CIG 40 μmol/L组（给予6-OHDA和40 μmol/L CIG）、PD模型+CIG 80 μmol/L组（给予6-OHDA和80 μmol/L CIG）。采用细胞计数试剂盒8法检测细胞存活情况，DCFH-DA荧光探针评估活性氧（ROS）含量，流式细胞术测定细胞凋亡，比色法分析超氧化物歧化酶（SOD）活性和丙二醛（MDA）含量，酶联免疫吸附测定法分析炎症因子肿瘤坏死因子-α（TNF-α）和白细胞介素-1β（IL-1β）分泌，Western blot实验测定B细胞淋巴瘤/白血病-2（Bcl-2）、Bcl-2相关X蛋白（Bax）、天冬氨酸特异性半胱氨酸蛋白酶3（Caspase3）、Cleaved Caspase3、P47phox、酪氨酸羟化酶（TH）、血红素加氧酶-1（HO-1）、转录因子NF-E2相关因子2（Nrf2）和醌氧化还原酶1（NQO1）蛋白表达。

结果

与空白对照组比较，PD模型组PC12细胞活力、SOD活性及Bcl-2、TH、HO-1、Nrf2和NQO1蛋白表达水平明显降低，细胞凋亡率、ROS含量、MDA含量、Bax、Caspase3、Cleaved Caspase3、P47phox蛋白表达水平、TNF-α、IL-1β含量显著升高，差异具有统计学意义（P<0.05）。与PD模型组比较，PD模型+CIG 20 μmol/L组、PD模型+CIG 40 μmol/L组、PD模型+CIG 80 μmol/L组PC12细胞活力、SOD活性及Bcl-2、TH、HO-1、Nrf2和NQO1蛋白表达水平明显升高，细胞凋亡率、ROS含量、MDA含量、Bax、Caspase3、Cleaved Caspase3、P47phox蛋白表达水平、TNF-α、IL-1β含量显著降低，均呈浓度依赖性，差异具有统计学意义（P<0.05）。

结论

CIG可以改善6-OHDA诱导的PC12细胞增殖，抑制细胞凋亡，减轻氧化应激损伤和改善炎症反应，从而保护PD细胞模型损伤。

关键词: 帕金森病, 山茱萸环烯醚萜苷, 增殖, 凋亡, 氧化应激, 炎症

Objective

To explore the protective effect of cornel iridoid glycoside (CIG) on 6-hydroxydopa (6-OHDA)-induced damage to Parkinson's disease (PD) cell model.

Methods

PC12 cells were divided into blank control group (untreated), PD model group (with 6-OHDA induced PD cell model), PD model+CIG 20 μmol/L group (with 6-OHDA and 20 μmol/L CIG), PD model+CIG 40 μmol/L group (administered 6-OHDA and 40 μmol/L CIG), PD model+CIG 80 μmol/L group (administered 6-OHDA and 80 μmol/L CIG). Cell counting kit 8 method was used to detect cell survival, DCFH-DA fluorescent probe was applied to assess ROS content, flow cytometry was performed to determine cell apoptosis, and colorimetric analysis of superoxide dismutase (SOD) activity and malondialdehyde (MDA) content, enzyme-linked immunosorbent assay to investigate the secretion of inflammatory factors tumor necrosis factor-α (TNF-α) and interleukin-1β (IL-1β), and Western blot to determine Bcl-2, Bax, Caspase3, Cleaved Caspase3, P47phox, TH, HO-1, Nrf2 and NQO1 protein expression.

Results

Compared with the blank control group, cell viability, SOD activity, Bcl-2, TH, HO-1, Nrf2 and NQO1 protein expression levels of PC12 cells in the PD model group were significantly reduced, and the apoptosis rate, ROS content, MDA content, Bax, Caspase3, Cleaved Caspase3, P47phox protein expression levels, TNF-α, IL-1β content were significantly increased (P<0.05). Compared with the PD model group, the PD model+CIG 20 μmol/L group, PD model+CIG 40 μmol/L group, PD model+CIG 80 μmol/L group PC12 cell viability, SOD Activity, Bcl-2, TH, HO-1, Nrf2 and NQO1 protein expression levels were remarkably increased, apoptosis rate, ROS content, MDA content, Bax, Caspase3, Cleaved Caspase3, P47phox protein expression levels, TNF-α, IL-1β content obviously reduced, all showed concentration dependence (P<0.05).

Conclusion

CIG can promote 6-OHDA-induced PC12 cell proliferation, inhibit apoptosis, reduce oxidative stress damage and improve inflammatory response, thereby protecting the PD cell model damage.

Key words: Parkinson's disease, Cornel iridoid glycoside, Proliferation, Apoptosis, Oxidative stress, Inflammation

表1 CCK-8法检测不同浓度CIG下PC12细胞的吸光度A值（Mean±SD，n=9）

组别	24 h	48 h	72 h
空白对照组	0.48±0.04	0.74±0.05	1.29±0.07
PD模型组	0.26±0.05^a	0.45±0.03^a	0.64±0.03^a
PD模型+CIG 20 µmol/L组	0.34±0.03^b	0.51±0.06^b	0.76±0.04^b
PD模型+CIG 40 µmol/L组	0.36±0.04^b	0.58±0.04^b	0.90±0.03^b
PD模型+CIG 80 µmol/L组	0.42±0.02^b	0.63±0.04^b	1.03±0.03^b
F值	26.390	77.938	370.110
P值	<0.001	<0.001	<0.001

表1 CCK-8法检测不同浓度CIG下PC12细胞的吸光度A值（Mean±SD，n=9）

组别	24 h	48 h	72 h
空白对照组	0.48±0.04	0.74±0.05	1.29±0.07
PD模型组	0.26±0.05^a	0.45±0.03^a	0.64±0.03^a
PD模型+CIG 20 µmol/L组	0.34±0.03^b	0.51±0.06^b	0.76±0.04^b
PD模型+CIG 40 µmol/L组	0.36±0.04^b	0.58±0.04^b	0.90±0.03^b
PD模型+CIG 80 µmol/L组	0.42±0.02^b	0.63±0.04^b	1.03±0.03^b
F值	26.390	77.938	370.110
P值	<0.001	<0.001	<0.001

表2 CIG对6-OHDA诱导的PC12细胞ROS含量的影响（Mean±SD，n=9）

组别	ROS含量（%）
空白对照组	102.94±3.16
PD模型组	358.07±48.06^a
PD模型+CIG 20 µmol/L组	293.19±24.65^b
PD模型+CIG 40 µmol/L组	240.57±12.33^b
PD模型+CIG 80 µmol/L组	164.85±23.57^b
F值	126.512
P值	<0.001

表2 CIG对6-OHDA诱导的PC12细胞ROS含量的影响（Mean±SD，n=9）

组别	ROS含量（%）
空白对照组	102.94±3.16
PD模型组	358.07±48.06^a
PD模型+CIG 20 µmol/L组	293.19±24.65^b
PD模型+CIG 40 µmol/L组	240.57±12.33^b
PD模型+CIG 80 µmol/L组	164.85±23.57^b
F值	126.512
P值	<0.001

图1 5组PC12细胞流式细胞术检测结果及Bcl-2、Bax、Caspase3和Cleaved Caspase3蛋白表达比较A：流式细胞仪检测结果；B：Western blot检测结果；PD：帕金森病；CIG：山茱萸环烯醚萜苷；Bcl-2：B细胞淋巴瘤/白血病-2；Bax：Bcl-2相关X蛋白；Caspase3：天冬氨酸特异性半胱氨酸蛋白酶3；GAPDH：甘油醛-3-磷酸脱氢酶

表3 CIG对6-OHDA诱导的PC12细胞凋亡及凋亡蛋白表达的影响（Mean±SD，n=9）

组别	Bcl-2蛋白	Bax蛋白	Caspase3蛋白	Cleaved Caspase3蛋白	细胞凋亡率（%）
空白对照组	0.62±0.03	0.27±0.02	0.11±0.03	0.08±0.04	4.53±1.18
PD模型组	0.24±0.05^a	0.64±0.08^a	0.66±0.01^a	2.66±0.32^a	18.68±2.59^a
PD模型+CIG 20 µmol/L组	0.33±0.03^b	0.54±0.06^b	0.48±0.03^b	2.10±0.25^b	16.03±1.10^b
PD模型+CIG 40 µmol/L组	0.40±0.04^b	0.38±0.03^b	0.37±0.06^b	1.52±0.16^b	14.50±1.90^b
PD模型+CIG 80 µmol/L组	0.51±0.03^b	0.34±0.07^b	0.33±0.06^b	0.73±0.12^b	10.48±1.50^b
F值	147.243	64.111	202.005	233.300	90.222
P值	<0.001	<0.001	<0.001	<0.001	<0.001

表3 CIG对6-OHDA诱导的PC12细胞凋亡及凋亡蛋白表达的影响（Mean±SD，n=9）

组别	Bcl-2蛋白	Bax蛋白	Caspase3蛋白	Cleaved Caspase3蛋白	细胞凋亡率（%）
空白对照组	0.62±0.03	0.27±0.02	0.11±0.03	0.08±0.04	4.53±1.18
PD模型组	0.24±0.05^a	0.64±0.08^a	0.66±0.01^a	2.66±0.32^a	18.68±2.59^a
PD模型+CIG 20 µmol/L组	0.33±0.03^b	0.54±0.06^b	0.48±0.03^b	2.10±0.25^b	16.03±1.10^b
PD模型+CIG 40 µmol/L组	0.40±0.04^b	0.38±0.03^b	0.37±0.06^b	1.52±0.16^b	14.50±1.90^b
PD模型+CIG 80 µmol/L组	0.51±0.03^b	0.34±0.07^b	0.33±0.06^b	0.73±0.12^b	10.48±1.50^b
F值	147.243	64.111	202.005	233.300	90.222
P值	<0.001	<0.001	<0.001	<0.001	<0.001

图2 Western blot检测PC12细胞中P47phox和TH蛋白表达PD：帕金森病；CIG：山茱萸环烯醚萜苷；TH：酪氨酸羟化酶；GAPDH：甘油醛-3-磷酸脱氢酶

表4 5组PC12细胞P47phox和TH蛋白表达量比较（Mean±SD，n=9）

组别	P47phox蛋白	TH蛋白
空白对照组	0.28±0.04	0.68±0.06
PD模型组	0.61±0.08^a	0.20±0.04^a
PD模型+CIG 20 µmol/L组	0.50±0.06^b	0.41±0.07^b
PD模型+CIG 40 µmol/L组	0.46±0.03^b	0.46±0.05^b
PD模型+CIG 80 µmol/L组	0.37±0.04^b	0.57±0.07^b
F值	53.560	51.341
P值	<0.001	<0.001

表4 5组PC12细胞P47phox和TH蛋白表达量比较（Mean±SD，n=9）

组别	P47phox蛋白	TH蛋白
空白对照组	0.28±0.04	0.68±0.06
PD模型组	0.61±0.08^a	0.20±0.04^a
PD模型+CIG 20 µmol/L组	0.50±0.06^b	0.41±0.07^b
PD模型+CIG 40 µmol/L组	0.46±0.03^b	0.46±0.05^b
PD模型+CIG 80 µmol/L组	0.37±0.04^b	0.57±0.07^b
F值	53.560	51.341
P值	<0.001	<0.001

表5 CIG对6-OHDA诱导的PC12细胞内SOD活性和MDA含量的影响（Mean±SD，n=9）

组别	SOD（U/mL）	MDA（µmol/mg）
空白对照组	5.41±0.43	25.24±3.82
PD模型组	1.49±0.23^a	70.47±2.36^a
PD模型+CIG 20 µmol/L组	2.40±0.05^b	51.96±2.49^b
PD模型+CIG 40 µmol/L组	3.40±0.33^b	38.71±1.25^b
PD模型+CIG 80 µmol/L组	3.92±0.66^b	34.01±2.56^b
F值	128.006	405.815
P值	<0.001	<0.001

表5 CIG对6-OHDA诱导的PC12细胞内SOD活性和MDA含量的影响（Mean±SD，n=9）

组别	SOD（U/mL）	MDA（µmol/mg）
空白对照组	5.41±0.43	25.24±3.82
PD模型组	1.49±0.23^a	70.47±2.36^a
PD模型+CIG 20 µmol/L组	2.40±0.05^b	51.96±2.49^b
PD模型+CIG 40 µmol/L组	3.40±0.33^b	38.71±1.25^b
PD模型+CIG 80 µmol/L组	3.92±0.66^b	34.01±2.56^b
F值	128.006	405.815
P值	<0.001	<0.001

表6 CIG对6-OHDA诱导的PC12细胞TNF-α和IL-1β含量的影响（ng/L，Mean±SD，n=9）

组别	TNF-α	IL-1β
空白对照组	258.87±9.37	36.86±2.59
PD模型组	347.98±23.07^a	66.96±6.45^a
PD模型+CIG 20 µmol/L组	319.46±7.60^b	52.13±1.56^b
PD模型+CIG 40 µmol/L组	301.94±17.37^b	42.28±2.46^b
PD模型+CIG 80 µmol/L组	266.00±35.31^b	35.20±3.13^b
F值	27.922	116.324
P值	<0.001	<0.001

表6 CIG对6-OHDA诱导的PC12细胞TNF-α和IL-1β含量的影响（ng/L，Mean±SD，n=9）

组别	TNF-α	IL-1β
空白对照组	258.87±9.37	36.86±2.59
PD模型组	347.98±23.07^a	66.96±6.45^a
PD模型+CIG 20 µmol/L组	319.46±7.60^b	52.13±1.56^b
PD模型+CIG 40 µmol/L组	301.94±17.37^b	42.28±2.46^b
PD模型+CIG 80 µmol/L组	266.00±35.31^b	35.20±3.13^b
F值	27.922	116.324
P值	<0.001	<0.001

图3 Western blot检测PC12细胞中HO-1、Nrf2和NQO1蛋白表达PD：帕金森病；CIG：山茱萸环烯醚萜苷；HO-1：血红素加氧酶-1；Nrf2：转录因子NF-E2相关因子2；NQO1：醌氧化还原酶1；GAPDH：甘油醛-3-磷酸脱氢酶

表7 CIG对6-OHDA诱导的PC12的HO-1、Nrf2和NQO1蛋白表达影响（Mean±SD，n=9）

组别	HO-1	Nrf2	NQO1
空白对照组	0.61±0.07	0.60±0.05	0.64±0.04
PD模型组	0.22±0.02^a	0.24±0.02^a	0.18±0.05^a
PD模型+CIG 20 µmol/L组	0.40±0.07^b	0.31±0.04^b	0.32±0.05^b
PD模型+CIG 40 µmol/L组	0.48±0.02^b	0.45±0.02^b	0.40±0.02^b
PD模型+CIG 80 µmol/L组	0.54±0.07^b	0.48±0.06^b	0.49±0.08^b
F值	65.323	107.629	101.015
P值	<0.001	<0.001	<0.001

表7 CIG对6-OHDA诱导的PC12的HO-1、Nrf2和NQO1蛋白表达影响（Mean±SD，n=9）

组别	HO-1	Nrf2	NQO1
空白对照组	0.61±0.07	0.60±0.05	0.64±0.04
PD模型组	0.22±0.02^a	0.24±0.02^a	0.18±0.05^a
PD模型+CIG 20 µmol/L组	0.40±0.07^b	0.31±0.04^b	0.32±0.05^b
PD模型+CIG 40 µmol/L组	0.48±0.02^b	0.45±0.02^b	0.40±0.02^b
PD模型+CIG 80 µmol/L组	0.54±0.07^b	0.48±0.06^b	0.49±0.08^b
F值	65.323	107.629	101.015
P值	<0.001	<0.001	<0.001

[1]	Cabreira V, Massano J. Parkinson's disease: clinical review and update[J]. Acta Med Port, 2019, 32(10): 661-670.
[2]	Chu J, Han W. Punicalagin exerts beneficial functions in 6-hydroxydopamine-treated SH-SY5Y cells by attenuating mitochondrial dysfunction and inflammatory responses[J]. Med Sci Monit, 2018, 24: 5905-5913.
[3]	Baghi M, Rostamian Delavar M, Yadegari E, et al. Modified level of mir-376a is associated with Parkinson's disease[J]. J Cell Mol Med, 2020, 24(4): 2622-2634.
[4]	Rostamian Delavar M, Baghi M, Safaeinejad Z, et al. Differential expression of miR-34a, miR-141, and miR-9 in MPP+-treated differentiated PC12 cells as a model of Parkinson's disease[J]. Gene, 2018, 662: 54-65.
[5]	Niu J, Xie J, Guo K, et al. Efficient treatment of Parkinson's disease using ultrasonography-guided rhFGF20 proteoliposomes[J]. Drug Deliv, 2018, 25(1): 1560-1569.
[6]	Cheng L, Chen L, Wei X, et al. NOD2 promotes dopaminergic degeneration regulated by NADPH oxidase 2 in 6-hydroxydopamine model of Parkinson's disease[J]. J Neuroinflammation, 2018, 15(1): 243.
[7]	Ramazani E, Fereidoni M, Tayarani-Najaran Z. Protective effects of vitamin K2 on 6-OHDA-induced apoptosis in PC12 cells through modulation bax and caspase-3 activation[J]. Mol Biol Rep, 2019, 46(6): 5777-5783.
[8]	Wei R, Rong C, Xie Q, et al. Neuroprotective effect of optimized yinxieling formula in 6-OHDA-induced chronic model of Parkinson's disease through the inflammation pathway[J]. Evid Based Complement Alternat Med, 2019, 2019: 2529641.
[9]	Rizor A, Pajarillo E, Johnson J, et al. Astrocytic oxidative/nitrosative stress contributes to Parkinson's disease pathogenesis: the dual role of reactive astrocytes[J]. Antioxidants (Basel), 2019, 8(8): 265.
[10]	蒋建华.雷帕霉素在6-羟基多巴诱导的帕金森病细胞及大鼠模型中的神经保护作用及其机制研究[D].苏州:苏州大学, 2013.
[11]	Kwon SH, Ma SX, Hwang JY, et al. Involvement of the Nrf2/HO-1 signaling pathway in sulfuretin-induced protection against amyloid beta25-35 neurotoxicity[J]. Neuroscience, 2015, 304: 14-28.
[12]	Mori MA, Delattre AM, Carabelli B, et al. Neuroprotective effect of omega-3 polyunsaturated fatty acids in the 6-ohda model of parkinson's disease is mediated by a reduction of inducible nitric oxide synthase[J]. Nutr Neurosci, 2018, 21(5): 341-351.
[13]	张丽,李春阳,赵玲,等.山茱萸环烯醚萜苷对局灶性脑缺血模型大鼠神经功能和神经元损伤的影响[J].中国康复理论与实践, 2007, 13(3): 201-202.
[14]	王娜,李林.山茱萸环烯醚萜苷对创伤性脑损伤模型大鼠脑内炎症反应的影响[J].中国临床药理学与治疗学, 2010, 15(3): 255-259.
[15]	沈红胜,许惠琴,陆春红,等.山茱萸环烯醚萜苷类成分对AGEs诱导HUVEC损伤的保护作用[J].中国药理学通报, 2016, 32(8): 1063-1067.
[16]	杨翠翠,包训杰,张丽,等.山茱萸环烯醚萜苷对APP/PS1/Tau三转基因小鼠脑内病理变化的影响[J].首都医科大学学报, 2019, 40(4): 588-595.
[17]	杨翠翠,郐学先,张丽,等.山茱萸环烯醚萜苷对冈田酸拟阿尔茨海默病细胞模型PP2A催化亚基C磷酸化及其调节酶Src的影响[J].药学学报, 2018, 53(7): 1036-1041.
[18]	Wiatrak B, Kubis-Kubiak A, Piwowar A, et al. Pc12 cell line: cell types, coating of culture vessels, differentiation and other culture conditions[J]. Cells, 2020, 9(4): 958.
[19]	Lee KF, Tung SY, Teng CC, et al. Post-treatment with erinacine A, a derived diterpenoid of H. erinaceus, attenuates neurotoxicity in MPTP model of Parkinson's disease[J]. Antioxidants (Basel), 2020, 9(2): 137.
[20]	Li L, Xu J, Wu M, et al. Protective role of microRNA-221 in Parkinson's disease[J]. Bratisl Lek Listy, 2018, 119(1): 22-27.
[21]	Ko YH, Kim SK, Kwon SH, et al. 7,8,4'-trihydroxyisoflavone, a metabolized product of Daidzein, attenuates 6-hydroxydopamine-induced neurotoxicity in SH-SY5Y cells[J]. Biomol Ther (Seoul), 2019, 27(4): 363-372.
[22]	Burke SJ, Lu D, Sparer TE, et al. Transcription of the gene encoding TNF-α is increased by IL-1β in rat and human islets and β-cell lines[J]. Mol Immunol, 2014, 62(1): 54-62.
[23]	Boi L, Pisanu A, Greig NH, et al. Immunomodulatory drugs alleviate l-dopa-induced dyskinesia in a rat model of Parkinson's disease[J]. Mov Disord, 2019, 34(12): 1818-1830.
[24]	雷小小,苏艳莹,李美云,等.山茱萸环烯醚萜苷中马钱苷和莫诺苷的研究进展[J].上海中医药杂志, 2018, 52(1): 104-108.
[25]	杨宁.山茱萸环烯醚萜苷提取工艺及降血糖机制初步研究[D].西安:陕西师范大学, 2015.
[26]	冀麟麟,王欣,钟祥健,等.山茱萸的化学成分及其抗氧化活性[J].现代食品科技, 2019, 35(5): 137-143, 36.
[27]	Johnson SL, Park HY, DaSilva NA, et al. Levodopa-reduced Mucuna pruriens seed extract shows neuroprotective effects against Parkinson's disease in murine microglia and human neuroblastoma cells, Caenorhabditis elegans, and Drosophila melanogaster[J]. Nutrients, 2018, 10(9): 1139.
[28]	Gao H, Wang D, Wang YL, et al. Pramipexole attenuates 6-OHDA-induced Parkinson's disease by mediating the Nurr1/NF-κB pathway[J]. Mol Biol Rep, 2021, 48(4): 3079-3087.

[1]	王振宇, 张洪美, 荆琳, 何名江, 闫奇. 膝骨关节炎相关炎症因子与血浆代谢物间的因果关系及中介效应[J/OL]. 中华损伤与修复杂志(电子版), 2024, 19(06): 467-473.
[2]	张洁, 罗小霞, 余鸿. 系统性免疫炎症指数对急性胰腺炎患者并发器官功能损伤的预测价值[J/OL]. 中华普外科手术学杂志(电子版), 2025, 19(01): 68-71.
[3]	唐梅, 周丽, 牛岑月, 周小童, 王倩. ICG荧光导航的腹腔镜肝切除术临床意义[J/OL]. 中华普外科手术学杂志(电子版), 2024, 18(06): 655-658.
[4]	付成旺, 杨大刚, 王榕, 李福堂. 营养与炎症指标在可切除胰腺癌中的研究进展[J/OL]. 中华普外科手术学杂志(电子版), 2024, 18(06): 704-708.
[5]	祝炜安, 林华慧, 吴建杰, 黄炯煅, 吴婷婷, 赖文杰. RDM1通过CDK4促进前列腺癌细胞进展的研究[J/OL]. 中华腔镜泌尿外科杂志(电子版), 2024, 18(06): 618-625.
[6]	杜贵伟, 陆勇, 成博, 贺薏, 梁爽. 钬激光碎石术术后联合坦索罗辛治疗对输尿管结石患者的影响分析[J/OL]. 中华腔镜泌尿外科杂志(电子版), 2024, 18(05): 491-496.
[7]	郑俊, 吴杰英, 谭海波, 郑安全, 李腾成. EGFR-MEK-TZ三联合分子的构建及其对去势抵抗性前列腺癌细胞增殖与凋亡的影响[J/OL]. 中华腔镜泌尿外科杂志(电子版), 2024, 18(05): 503-508.
[8]	胡思平, 熊性宇, 徐航, 杨璐. 衰老相关分泌表型因子在前列腺癌发生发展中的作用机制[J/OL]. 中华腔镜泌尿外科杂志(电子版), 2024, 18(05): 425-434.
[9]	高娟, 徐建庆, 闫芳, 丁盛华, 刘霞. Rutkow、TAPP、TEP 手术治疗单侧腹股沟疝患者的临床疗效及对血清炎症因子水平的影响[J/OL]. 中华疝和腹壁外科杂志(电子版), 2024, 18(06): 675-680.
[10]	孙璐, 蒋亚玲, 陈凌君. 布托啡诺对脑缺血再灌注损伤大鼠神经炎症和JAK2/STAT3信号通路的影响[J/OL]. 中华细胞与干细胞杂志(电子版), 2024, 14(06): 344-350.
[11]	杜霞, 马梦青, 曹长春. 造影剂诱导的急性肾损伤的发病机制及干预靶点研究进展[J/OL]. 中华肾病研究电子杂志, 2024, 13(05): 279-282.
[12]	李京, 牛博, 刘晓蓓, 魏新雪, 黄荣. circ-SESN2 沉默靶向调控miRNA-23a-5p/ULK1 在神经细胞氧化应激损伤中的作用机制研究[J/OL]. 中华神经创伤外科电子杂志, 2024, 10(05): 263-272.
[13]	王国强, 张纲, 唐建坡, 张玉国, 杨永江. LINC00839 调节miR-17-5p/WEE1 轴对结直肠癌细胞增殖、凋亡和迁移的影响[J/OL]. 中华消化病与影像杂志(电子版), 2024, 14(06): 491-499.
[14]	陈利, 杨长青, 朱风尚. 重视炎症性肠病和代谢相关脂肪性肝病间的串话机制研究[J/OL]. 中华消化病与影像杂志(电子版), 2024, 14(05): 385-389.
[15]	王湛, 李文坤, 杨奕, 徐芳, 周敏思, 苏珈仪, 王亚丹, 吴静. 炎症指标在早发性结直肠肿瘤中的应用[J/OL]. 中华临床医师杂志(电子版), 2024, 18(09): 802-810.

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